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Artículo recibido 12 de junio de 2025.
Artículo aceptado 15 de agosto de 2025.
Artículo publicado 5 de octubre de 2025.
Optimización del tratamiento de explantes y su influencia en la
micropropagación in vitro de Zingiber officinale
Zarate, Iris P1; Bustos, Mariana C.1; Garro, Oscar A.1; Maguna, Fabiana P1; Herman,
Cristian1
1Laboratorio de Química Inorgánica, Universidad Nacional del Chaco Austral (UNCAUS), Cte.
Fernandez 755 (3700) - Pcia. Roque Saenz Peña, Chaco, Argentina
zarateiris1@gmail.com marianacarolinabustos@gmail.com garro@uncaus.edu.ar
fmaguna@uncaus.edu.ar cristian@uncaus.edu.ar
ORCID Iris Zarate 0009-0000-2622-1387
ORCID Mariana Bustos 0009-0006-0482-1406
ORCID Oscar Garro 0000-0003-4106-2315
ORCID Fabiana Maguna 0009-0003-4027-9819
ORCID Herman Cristian 0009-0000-6321-6210
Resumen
La micropropagación de Zingiber officinale es una estrategia clave para su producción y
expansión comercial, ofreciendo ventajas respecto a la eficiencia en la producción
masiva y en relación con la sanidad vegetal obtenida. Esta investigación se centró en
optimizar el pretratamiento de explantes obtenidos de rizomas de comercios locales y
productores de la provincia de Misiones, así como el protocolo de sanitización para una
iniciación exitosa del cultivo in vitro. Los resultados indican que las yemas de rizomas
de no más de 7 días de antigüedad son los explantes más adecuados para la
micropropagación. La combinación de métodos mecánicos y químicos resultó en una
sanitización óptima. A pesar de identificar el método de sanitización más apropiado, la
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persistencia de contaminación llevó a evaluar el biocida PPM® (Mezcla Conservante de
Plantas), a una concentración de 0,5 mg/L, cuya incorporación aumentó
significativamente la tasa de supervivencia de los explantes y disminuyó la
contaminación. Si bien se encontraron desafíos en el establecimiento de plantas madre
ex vitro debido a la sensibilidad a las condiciones ambientales, se lograron desarrollar
plantas bajo condiciones controladas, aunque en número limitado. Esta investigación
resalta la importancia de la selección adecuada del explante y la optimización del
protocolo de sanitización, incluyendo el uso de PPM®, para mejorar la eficiencia de la
micropropagación.
Palabras clave: Jengibre, zingiber officinale, micropropagación, cultivo in vitro
Abstract
Optimization of explant treatment and its influence on in vitro micropropagation of
Zingiber officinale
Micropropagation of Zingiber officinale is a key strategy for its production and
commercial expansion, offering advantages in terms of efficiency in mass production
and plant health. This research focused on optimizing the pretreatment of explants
obtained from rhizomes sourced from local markets and producers in Misiones, as well
as the sanitization protocol for a successful initiation of in vitro culture. The results
indicate that rhizome buds no more than 7 days old are the most suitable explants for
micropropagation. The combination of mechanical and chemical methods resulted in
optimal sanitization. Despite identifying the most appropriate sanitization method, the
persistence of contamination led to the evaluation of the biocide PPM® (Plant
Preservative Mixture) at a concentration of 0,5 mg/L, whose incorporation significantly
increased the survival rate of the explants and reduced contamination. Although
challenges were encountered in establishing mother plants ex vitro due to sensitivity to
environmental conditions, plants were successfully developed under controlled
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conditions, albeit in limited numbers. This research highlights the importance of proper
explant selection and optimization of the sanitization protocol, including the use of
PPM®, to improve the efficiency of micropropagation.
Keywords: Ginger, Zingiber officinale, micropropagation, in vitro culture
INTRODUCCIÓN
Zingiber officinale Roscoe, conocida comúnmente como jengibre o ginger, es
una especie cultivada desde la antigüedad en Asia. Es una planta monocotiledónea
perteneciente a la familia de las zingiberáceas (Incer Rocha & León Lopez, 2016; Nair,
2013b, 2013a). Fue descrita por primera vez en 1807 por William Roscoe (botánico). Su
nombre, Zingiber, deriva de una palabra sánscrita que significa “cuerno” en referencia a
las protuberancias que surgen en la superficie del rizoma, las cuales lo hacen
característico (Elpo & Negrelle, 2004). Morfológicamente, la planta llega a tener hasta
90 cm. de altura, con largas hojas de hasta 20 cm. (Figura 1). El elemento morfológico
característico y de interés para este estudio es el rizoma. Externamente, su color va del
amarillo al marrón brillante con terminaciones conocidas como “dedos” que surgen
oblicuamente de los rizomas (Elpo & Negrelle, 2004).
Figura 1: Zingiber officinale Roscoe: vista general de la planta y detalles de las flores. Fuente:
Brandt et al., 2016.
Zingiber officinale Roscoe, es una especie herbácea de gran relevancia
económica y terapéutica a nivel mundial. Su valor comercial resulta de su uso culinario,
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así como también de su aplicación en la industria farmacéutica (Kandiannan et al.,
1996; Seran, 2013; Villegas Ramírez & Palma Zúñiga, 2019). Esta importancia se
atribuye a su compleja composición química, especialmente a los compuestos fenólicos
de su rizoma, como los gingeroles y shogaoles, que le confieren propiedades
antiinflamatorias, antioxidantes, antimicrobianas e inmunomoduladoras (Syafitri et al.,
2018; Zhang et al., 2021). Acuña & Torres (2010) y Platinetti et al. (2016) mencionan
su uso para el tratamiento de una gran variedad de enfermedades como artritis
reumatoide, hipercolesterolemia, asma, estreñimiento, entre otras. Mora et al. (2021)
publicaron la actividad antibacteriana in vitro de los extractos metanólicos de jengibre
frente a patógenos gram-positivos y gram-negativos, mostrando su actividad
antimicrobiana. Todos los usos antes mencionados se deben a que el rizoma posee una
oleorresina, donde el aceite esencial está constituido por sesquiterpenos (α-zingiberene,
arcurcumene, β-bisabolene) que proporcionan el aroma característico del jengibre; y la
resina está compuesta por gingerol, shogaol, zingerona, que otorgan la pungencia. Estos
últimos compuestos son responsables de las propiedades medicinales atribuidas a esta
especie (Acuña & Torres, 2010).
El jengibre, suele consumirse en forma de rizoma maduro fresco, en la
preparación de infusiones y alimentos funcionales, y también como condimento seco y
molido en el ámbito culinario. A pesar de su alta demanda, la propagación del jengibre
enfrenta limitaciones significativas. Al ser una especie estéril que no produce semillas
viables, su multiplicación depende exclusivamente de la propagación vegetativa a través
de segmentos de rizoma (Seran, 2013). Este método tradicional resulta lento y facilita la
transmisión sistémica de patógenos como hongos y bacterias, lo que reduce
drásticamente el rendimiento y la calidad fitosanitaria de los cultivos. Aquí es donde
cobra importancia la micropropagación como método de producción y expansión
comercial de muchos cultivos hortícolas. Frente a estos desafíos, la micropropagación in
vitro emerge como una herramienta biotecnológica crucial que permite la producción
masiva de plantas libres de enfermedades, homogéneas y de alta calidad en un espacio y
tiempo reducidos. Esta técnica tiene su esencia en la totipotencialidad de las especies
vegetales, donde la manipulación in vitro de células, tejidos u órganos permite la
regeneración de individuos completos, aprovechando su capacidad inherente de
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desarrollo (Brijesh & Ajjappala, 2023; Rodríguez Hernández, 2024; Wijerathna-Yapa &
Hiti-Bandaralage, 2023). Este método puede realizarse a través de diferentes vías de
regeneración, como ser: brotación de yemas adventicias preexistentes, producción de
yemas nuevas, embriogénesis somática y multiplicación clonal (Nair, 2013a, 2013b). El
cultivo de tejidos in vitro tiene una gran importancia, no solo por el papel clave que
desempeña hoy en la biotecnología agrícola, sino también por el enorme potencial que
ofrece como herramienta de investigación para entender mejor los desafíos, tanto
teóricos como prácticos de la biología de las plantas. Sin embargo, el principal cuello de
botella para el éxito de esta técnica en jengibre es la alta incidencia de contaminación
microbiana. Dado que los explantes se obtienen de rizomas, órganos de reserva
subterráneos, estos albergan una elevada carga de microorganismos tanto en su
superficie como en sus tejidos internos (endófitos), lo que dificulta enormemente el
establecimiento de un cultivo axénico inicial.
El establecimiento de protocolos eficientes para la micropropagación de
Zingiber officinale es un área de investigación activa. Estudios recientes continúan
optimizando la desinfección de explantes, explorando la eficacia de aditivos como
nanopartículas o biocidas como PPM® para controlar contaminantes persistentes
(Hürkan & Hürkan, 2025; Ongtanasup et al., 2024; Tung et al., 2022). Paralelamente, en
las fases de multiplicación se investiga el ajuste fino de reguladores de crecimiento
como 6-bencilaminopurina (BAP) y acido 1-naftalenacetico (ANA)(Karyanti et al.,
2021; Zahid et al., 2021), y se avanza hacia sistemas de cultivo líquido, como los
Sistemas de Inmersión Temporal (SIT), para incrementar las tasas de multiplicación y la
producción de biomasa (Lim et al., 2024; Villegas Ramírez & Palma Zúñiga, 2019). Por
lo tanto, este estudio se centra en optimizar la fase inicial y más crítica del proceso: la
obtención de un cultivo aséptico y viable a partir de material vegetal de alta carga
microbiana. Abordar este prerrequisito es esencial para la posterior aplicación de
técnicas avanzadas de multiplicación y escalado masivo. Esta investigación tuvo como
objetivo optimizar el pretratamiento de explantes obtenidos a partir de rizomas
provenientes de comercios locales y productores de Misiones, así como mejorar el
protocolo de sanitización para favorecer una iniciación exitosa del cultivo in vitro. Para
ello, se determinó la edad óptima de las yemas de rizoma utilizadas como explantes
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iniciales, se comparó la eficacia de tres protocolos de sanitización química en la
reducción de la contaminación y la supervivencia de los explantes, y se evaluó el efecto
del biocida PPM® en el control de contaminantes persistentes.
MATERIALES Y MÉTODOS
Selección de material vegetal
Para asegurar la representatividad y diversidad de la muestra, se seleccionaron
especímenes de jengibre comercial aplicando criterios como variedad de origen, tamaño
del rizoma, turgencia, entre otros detallados más adelante. Paralelamente, se
identificaron y adquirieron plantas madre de cultivos tradicionales en la región de
Misiones, considerando criterios de edad de la planta, vigor y ausencia de signos de
enfermedad. Esta estrategia de muestreo estratificado permitió incluir tanto la
variabilidad presente en el mercado comercial como las características de plantas
cultivadas en entornos rurales, enriqueciendo el estudio con diversos contextos y
condiciones de crecimiento.
Establecimiento y mantenimiento de plantas madre ex vitro
Se utilizó material vegetal de un doble origen. Por un lado, se establecieron
plantas madre ex vitro a partir de plántulas y rizomas frescos de Misiones (Biofábrica de
Oberá y Gdor. López). Estas plantas se cultivaron en una mezcla 1:1 de tierra negra y
sustrato comercial (Grow-Mix®) bajo malla de media sombra, con riego diario y
soportando temperaturas de hasta 42 °C.
Se realizó un seguimiento fenológico diario y personalizado, llevado a cabo por
un único operario para garantizar la consistencia en la toma de datos. Las variables
registradas incluyeron: altura de la planta (cm), número de hojas funcionales, diámetro
del tallo y la aparición de signos de senescencia como la clorosis foliar. De los 20
ejemplares iniciales, 5 alcanzaron una altura promedio de 65 cm antes de mostrar un
deterioro significativo, momento en el cual partes aéreas y subterráneas se utilizaron
como fuente de explantes. El deterioro se caracterizó por clorosis y escaso desarrollo de
rizoma. Los ensayos in vitro demostraron un bajo índice de iniciación de crecimiento en
las partes aéreas, confirmando que las yemas axilares son los explantes más adecuados.
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La selección de estas plantas como fuente de explantes se basó en criterios
fenotípicos como el vigor general, la altura, el número de hojas y el desarrollo del
rizoma. La integración de estos parámetros proporcionó una evaluación exhaustiva del
estado de desarrollo y el potencial de crecimiento de las plantas silvestres para su
inclusión en el estudio. Esto, permite inferir el potencial de iniciación y crecimiento de
los cultivos in vitro, siendo fundamentales para la correcta selección del material
vegetal.
La selección de rizomas de origen comercial se realizó basándose en criterios
morfológicos como tamaño, turgencia, coloración del peridermo, número de yemas
adventicias visibles. Y parámetros morfológicos microscópicos mediante inspección de
forma visual ausencia de signos de patógenos fúngicos o áreas senescentes. Esta
evaluación primaria se complementó con una inspección microscópica utilizando una
lupa binocular (Motic DM39®).
Para la extracción de yemas de sus rizomas se utilizan pinzas metálicas,
bisturíes, lupa binocular, campana de flujo laminar y esterilizador de anzas eléctrico
DLAB ST800-E.
Otros materiales usados: agua corriente, agua destilada, cepillos de diferentes
largo y tipo de cerda, detergente comercial, Tween 20, hipoclorito de sodio (Ayudín®)
5,6 % NaClO, papel tissue tipo servilleta, frascos de vidrio de diferentes tamaños,
PPM®, tubos de ensayo fondo plano, cortos y largos.
Sanitización del material vegetal
El proceso de aseguramiento de la asepsia de los explantes es una etapa crítica
que implica una serie de procedimientos secuenciales y rigurosos como lo menciona
(Posada-Pérez, et al. 2021). El objetivo principal de esta fase es la eliminación
exhaustiva de cualquier contaminante superficial y endógeno que pueda comprometer el
establecimiento y desarrollo del cultivo in vitro. Para ello, se diseñó un protocolo de
sanitización escalonado, que abarca desde la eliminación macroscópica y mecánica de
contaminantes superficiales hasta una desinfección química exhaustiva. Este proceso
culmina con una verificación microscópica bajo lupa binocular para asegurar la asepsia
del explante.
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Para determinar el tratamiento de sanitización más adecuado, se realizaron los
ensayos detallados en la tabla 1. En cada tratamiento se utilizaron 12 explantes con 3
(tres) repeticiones cada uno. Se dejó en condiciones de fotoperiodo de 16/8 de
luz/oscuridad y 28 ±1°C con una lámpara de luz blanca fría de 3000 lux. Los
tratamientos fueron evaluados durante un período de 2 semanas. Al finalizar este
tiempo, se procedió a observar las siguientes variables: porcentaje de contaminación
total (%CT) y porcentaje de sobrevivencia (%S). Para ello, se aplicaron las fórmulas
descritas por Aguilera-Arango et al. (2021):
(1)
(2)
Tabla 1: Descripción de los tratamientos ensayados para la sanitización de Zingiber officinale.
Tratamiento
A
B
C
PASO 1
Enjuague con agua corriente para descartar cuerpos extraños
groseros
PASO 2
Lavado bajo agua corriente con cepillado suave en los pliegues y
retirar restos de sustrato
PASO 3
Lavado con agua y
detergente - 15 min
Lavado con agua y
detergente - 15 min
Lavado con agua y
detergente - 20 min
PASO 4
Lavado con NaClO
2,5%1 + TWEEN®20
15 min
Lavado con etanol
70%
1 min
Lavado con etanol
70%
2 min
PASO 5
Lavado con etanol
70%
2 min
Lavado con NaClO
1,5% + TWEEN®20
15 min
Lavado con NaClO
2,5% + TWEEN®20
20 min
FINAL
Enjuague con agua destilada estéril
1 expresados en v/v
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Finalmente, se efectuó un enjuague exhaustivo con agua destilada y se
dispusieron sobre papel absorbente para su secado a temperatura ambiente. En la (figura
2) se puede observar un esquema que representa las actividades realizadas.
10
11
Figura 2: Esquema de actividades realizadas para la optimización del tratamiento de
Zingiber officinale Roscoe.
Análisis estadístico
Los datos obtenidos para las variables de porcentaje de contaminación (%CT)
y porcentaje de supervivencia (%S) fueron analizados estadísticamente. Se empleó un
diseño completamente al azar, seguido de un análisis de varianza (ANOVA) de una vía
para determinar si existían diferencias significativas entre los tratamientos de
sanitización. Las medias de los tratamientos fueron comparadas mediante la prueba de
Tukey, con un nivel de significancia de p<0,05.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
El establecimiento de plantas madre ex vitro para generar una fuente de
explantes de alta calidad fisiológica mostró un éxito limitado bajo las condiciones
agroclimáticas locales. De un total de 20 ejemplares iniciales puestos en cultivo, se
registró una tasa de supervivencia y desarrollo viable del 25% tras 12 semanas de
seguimiento. Estos 5 ejemplares alcanzaron una altura promedio de 65 cm. Sin
embargo, coincidiendo con el incremento de las temperaturas en noviembre y
diciembre, que alcanzaron picos de hasta 42 °C, todo el lote de plantas, incluyendo las
de mayor desarrollo, manifestó un severo estrés abiótico. Se observó clorosis foliar
progresiva, detención del crecimiento y senescencia prematura, lo que impidió su
consolidación como fuente sostenible de explantes. Este resultado subraya la alta
sensibilidad de Zingiber officinale a condiciones de estrés térmico y justifica la decisión
de centrar los esfuerzos de optimización en protocolos de desinfección para rizomas
comerciales, que representan un material de partida más accesible, aunque con una
mayor carga contaminante inicial.
Como resultado, en relación con la generación de rizomas y/o planta madre
para insumo como explantes, estamos en condiciones de afirmar que es posible
establecer una planta madre con características fitosanitarias aceptables y
significativamente superiores a las especies cultivadas de modo tradicional, dado que se
ha conseguido desarrollar especies de hasta 90 cm de altura con rizomas de hasta 5 cm
de largo, en laboratorio. Sin embargo, el número de ejemplares ha sido insuficiente para
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los ensayos requeridos y para convertirse en fuente continua de explantes. Esto podría
deberse a la alta sensibilidad de la especie a cambios mínimos en las condiciones
ambientales. Los resultados relacionados con esta variable coinciden con el estudio de
Chavarría et al. (2020), que indica que muchas plantas, al brotar, se ven afectadas por
las altas temperaturas y la elevada humedad. Uno de los efectos más destructivos para el
cultivo son las altas temperaturas, que calientan la superficie del suelo, causando daños
en la epidermis a nivel del suelo. Esto puede llevar a la estrangulación y, finalmente, a
la muerte de la planta. Cabe destacar que nuestras plantas alcanzaron su mejor estado en
la segunda quincena de noviembre, periodo en el que se registraron elevadas
temperaturas en Roque Sáenz Peña.
En el tratamiento de las yemas seleccionadas como explantes, posterior a la
limpieza macroscópica y la sanitización con agentes químicos, se implementó una
microdisección manual progresiva bajo condiciones de aumento visual. Este
procedimiento consistió en la remoción secuencial y controlada de las capas externas
protectoras (catáfilas) de la yema hasta aislar el meristemo apical y las primordiales
foliares subyacentes, alcanzando un tamaño final del explante de aproximadamente 7
mm. Esta extracción de catáfilas, que redujo el tamaño del explante, buscó minimizar la
carga microbiana endófita potencialmente alojada en los tejidos más externos, y los
resultados obtenidos revelaron un retraso significativo en la incidencia de
contaminación en los cultivos in vitro.
La comparación de los tres métodos de sanitización permitió identificar el
protocolo más eficaz, destacándose aquel que exhibió la mayor tasa de supervivencia y
la menor incidencia de contaminación. Cabe señalar que la presencia de contaminación
fúngica y/o bacteriana persistió en todos los métodos, aunque en diversas
proporciones.
El análisis de varianza (ANOVA) reveló diferencias estadísticamente
significativas entre los tratamientos de sanitización tanto para el porcentaje de
contaminación (p<0,05) como para el de supervivencia (p<0,05). Como se observa en
la Tabla 2, la prueba de comparación de medias mostró que el tratamiento C fue
significativamente más efectivo que los tratamientos A y B en la reducción de la
contaminación. Con el tratamiento C se logró disminuir la contaminación a un 39,4%,
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un valor significativamente inferior al 90,6% y 86,1% observados en los tratamientos
A y B, respectivamente. Sin embargo, una tasa de contaminación persistente cercana al
40% sigue representando un problema para el establecimiento exitoso del cultivo. Por
consiguiente, se determinó la necesidad de utilizar PPM® (Mezcla Conservante de
Plantas). Este es un biocida de amplio espectro, cuya naturaleza termoestable permite
esterilizarlo directamente en el autoclave junto con el medio de cultivo (Grimaldi &
Assumpção Bastos, 2023). En dosis óptimas, PPM® es extremadamente eficaz para
prevenir la germinación de esporas bacterianas y fúngicas sin afectar la proliferación y
regeneración de los callos. Por estas razones, y por ser una alternativa económica a los
antibióticos , se procedió a adicionarlo en una concentración de 0,5 mg/L al medio de
cultivo basal del tratamiento C, dando origen al tratamiento D.
Tabla 2: Tasa de contaminación y supervivencia de explantes de Zingiber officinale según el
tratamiento de sanitización. Los valores representan la media ± el error estándar. Letras
distintas en la misma columna indican diferencias estadísticamente significativas según la
prueba de Tukey (p<0,05).
Tratamiento
Total de
explantes (n)
Contaminación Total (%)
Supervivencia
(%)
A
32
90,6 ± 0,6 a
9,4 ± 1,0 a
B
36
86,1 ± 1,5 a
13,9 ± 0,6 a
C (sin PPM®)
33
39,4 ± 0,6 b
60,6 ± 1,5 b
D (C + PPM®)
36
33,3 ± 1,0 b
66,7 ± 2,0 b
En cuanto a la supervivencia, los tratamientos C (60,6%) y D (66,7%)
mostraron resultados significativamente superiores a los tratamientos A y B. En este
contexto, Sanatombi & Sanatombi (2017), señalan que las bajas tasas de supervivencia
debido a la contaminación son un problema recurrente en los estudios de
micropropagación. Aunque la adición de PPM® en el tratamiento D incrementó la
supervivencia en aproximadamente un 6% en comparación con el tratamiento C, esta
diferencia no fue estadísticamente significativa. Esto sugiere que, si bien el PPM®
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contribuye al control de contaminantes, el protocolo de sanitización C es el principal
responsable de la mejora en la viabilidad de los explantes. Así, la efectividad del
protocolo en la reducción de la contaminación depende críticamente del tipo de agente y
el tiempo de exposición utilizados, lo que también concuerda con dichos autores. En
este trabajo se ha buscado la optimización sin recurrir a compuestos de alta toxicidad
como el HgCl2, como lo mencionan Chavan et al. (2018); Mehaboob et al., (2019);
Mohd Azmi Muda et al., (2004) en diferentes concentraciones y con distintos tiempos
de exposición para la sanitización de los explantes.
Los resultados de supervivencia refuerzan la eficacia del tratamiento
combinado. Si bien el método C por sí solo es apropiado, la adición de PPM® (D)
incrementó la supervivencia en casi un 6% hasta alcanzar un 66,7% (%S). Al respecto,
Miri (2020) afirma que debido a que el rizoma es una parte subterránea altamente
contaminada, una combinación de agentes sanitizantes muestra efectos sinérgicos en el
control de la contaminación fúngica y bacteriana. Aunque el protocolo específico de
dicha investigación difiere del nuestro, el autor reportó una tasa de esterilización del
65%, similar al 66,7% de supervivencia obtenido en nuestro trabajo, lo que valida la
estrategia de incorporar PPM® como un refuerzo eficaz al protocolo de sanitización.
CONCLUSIONES
En conclusión, la presente investigación ha permitido optimizar aspectos
cruciales para el establecimiento exitoso de la micropropagación de Zingiber officinale.
Se determinó que las yemas originadas en rizomas con no más de 7 días de antigüedad
constituyen los explantes más adecuados para iniciar el cultivo in vitro. Además, se
estableció que una combinación de métodos mecánicos y químicos resulta en una
sanitización óptima de los explantes.
Entre los métodos de sanitización evaluados, el tratamiento C demostró ser el
más apropiado, exhibiendo la mayor tasa de supervivencia y la menor incidencia de
contaminación. No obstante, la persistencia de contaminación fúngica y/o bacteriana en
todos los tratamientos condujo a la exploración del uso de conservantes. La
incorporación del biocida PPM® (Mezcla Conservante de Plantas) al protocolo de
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cultivo demostró ser una estrategia útil, elevando la tasa de supervivencia al 66,7% y
validando el enfoque combinado para el control de la contaminación.
Por otro lado, se encontraron desafíos en el establecimiento de plantas madre
con características fitosanitarias óptimas y en cantidad suficiente para los ensayos y
como fuente de explantes. La sensibilidad de la especie a las variaciones ambientales,
especialmente las altas temperaturas, afectó el desarrollo y ocasionó pérdidas
significativas. Sin embargo, se logró desarrollar plantas de hasta 90 cm de altura con
rizomas de hasta 5 cm de largo bajo condiciones controladas, aunque en número
limitado.
Así, esta investigación destaca la importancia de la selección del explante y la
optimización del protocolo de sanitización, incluyendo el uso de PPM®. Los resultados
obtenidos en el cultivo in vitro sientan las bases para la producción masiva de plántulas
de jengibre con sanidad superior, lo cual tiene implicaciones significativas para su
producción y expansión comercial.
Se aborda un problema persistente y de gran relevancia práctica en la
micropropagación de especies geófitas como el jengibre: la alta carga de contaminantes
endógenos y superficiales. Si bien el uso de PPM® o de protocolos de desinfección con
hipoclorito y etanol ya está en uso, la contribución del trabajo radica en la optimización
sistemática y la combinación de estos elementos para material vegetal específico
(rizomas de origen comercial y de productores locales), lo cual ofrece un valor práctico
directo para laboratorios de biotecnología.
A partir de estos hallazgos, surgen nuevas líneas de investigación, como: La
evaluación de un gradiente de concentraciones de PPM® para determinar la dosis
óptima para el control de la contaminación con la fitotoxicidad; El análisis de la
estabilidad genética de las plántulas regeneradas mediante marcadores moleculares; La
optimización de la aclimatación ex vitro, explorando diferentes sustratos y condiciones
ambientales para superar la sensibilidad ambiental detectada.
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